基于网络药理学和分子对接技术探讨
来源: 时间:2023-11-05
[摘要] 目的: 利用网络药理学探究山楂-丹参与枳壳-柴胡的活性成分、作用靶点及生物学途径,揭示药对“同病异治”高脂血症的机制。方法: 采用TCMSP和文献挖掘获取山楂-丹参与枳壳-柴胡药对化学成分与靶点,通过TTD、DISGENET、GeneCards收集高脂血症相关靶点。整合药对活性成分靶点与高脂血症靶点,利用Metascape数据库进行KEGG和GO-BP分析,AutoDock进行关键靶点和药物活性成分的对接。结果: 网络分析表明,两药对通过IL-6、TNF、VEGFA、PPARG、MAPK1等关键蛋白,对剪切力和动脉粥样硬化、糖尿病并发症、Toll样受体、TNF、MAPK等信号通路,脂质、脂多糖及活性氧代谢等生物过程调控血脂水平。山楂-丹参通过特有的INS、MAP2K1、IL4、EDN1、EDNRA、G6PC等蛋白所在的PI3K-Akt、胰岛素等信号通路,氧化应激、细胞对胰岛素刺激的反应等生物过程发挥抗高脂血症作用。枳壳-柴胡通过特有的ADIPOQ、LDLR、CES1、SOAT1蛋白所在的低密度脂蛋白及血浆脂蛋白清除、脂肪酸代谢等信号通路,胆固醇运输、甾醇转运、低密度脂蛋白颗粒清除等生物过程发挥抗高脂血症作用。两药对共有活性成分槲皮素、β-谷甾醇与核心靶点均具有较好的结合活性。结论: 山楂-丹参与枳壳-柴胡既通过高介度值的共同靶点、信号通路及生物过程,又通过各自不同的特色靶点、通路及生物过程,治疗高脂血症,初步阐明高脂血症“同病异治”的科学内涵。
[关键词]: 山楂-丹参;枳壳-柴胡;高脂血症;同病异治;网络药理学“同病异治”即据辨病之病位、病因、病机、病性不同,治法有异,为中医辨证论治精髓[1-2]。高脂血症在中医古籍中无正式命名,病理状态多以“血浊”、“痰浊”等概括[3]。中医认为血浊日久,化生痰浊、瘀血等[4],其治法当以疏肝、健脾治其本,理气祛痰、活血化瘀治其标[5]。如活血化痰功效的山楂-丹参药对[6],《日华子本草》中记载的具疏肝理气功效的枳壳-柴胡药对[7],临床和现代药理研究已证实其对高脂血症的治疗作用[8-10],但“同病异治”机理尚未阐明。
网络药理学从系统水平预测复方有效成分及疾病靶点[11],近年来成为阐释中药复方“同病异治”机制的有力工具。如利用网络药理学有效的区分寒、热性方剂“同病异治”的不同生物效应[12];预测逍遥散与开心散的组方差异,阐明抑郁症“同病异治”的作用机理[13];分析茯苓杏仁甘草汤及橘枳姜汤干预冠心病靶点效应,通过成分、靶点及通路的相关分析,揭示“同病异治”的科学内涵[14]。
本研究采用网络药理学技术,从山楂-丹参和枳壳-柴胡抗高脂血症的活性成分和作用靶点、信号通路的角度,寻找药对治疗高脂血症的共同靶点及作用机制,有助于两药对“同病异治”科学内涵的诠释。
1.材料与方法
1.1 山楂-丹参药对与枳壳-柴胡药对活性成分筛选及潜在靶点预测
中药系统药理学数据库和分析平台(TCMSP, https://tcmspw.com/tcmsp.php)分别输入“丹参”、“枳壳”、“柴胡”,获取药材的活性成分。由于TCMSP没有山楂药名,故检索文献得山楂活性成分,获取CAS号,输入TCMSP数据库获相应活性成分。以口服生物利用度(OB≥30%)和类药性(drug-likeness,DL≥0.18)筛选出符合条件的化合物,检索文献进行活性成分补充。根据活性成分,获得相应靶点,使用Uniprot数据库(https://www.uniprot.org/)进行人类靶点校正。
1.2 高脂血症靶点筛选
在GeneCards(https://www.genecards.org/)、TTD (http://db.idrblab.net/ttd/)和Disgenet 数据库(http://www.disgenet.org)中以“Hyperlipidemia”为关键词进行检索,收集药理作用或高脂血症治疗靶点,取并集。分别与山楂-丹参和枳壳-柴胡活性成分靶点取交集,得山楂-丹参抗高脂血症靶点和枳壳-柴胡抗高脂血症靶点。为研究两药对抗高脂血症“同病异治”机理,取交集,为两药对抗高脂血症的共同靶点(SD-ZC-bd)。将山楂丹参抗高脂血症靶点去除SD-ZC-bd,得山楂-丹参抗高脂血症特异靶点(SD-tbd)。同理即得枳壳-柴胡抗高脂血症特异靶点(ZC-tbd)。
1.3 蛋白互作网络的构建及分析
根据上述筛选和预测结果,去除无对应靶点的化学成分及重复靶点。在String数据库(https://string-db.org)中构建如下网络:(1)山楂-丹参和枳壳-柴胡抗高脂血症共有靶点的蛋白-蛋白互作网络(PPI);(2)山楂-丹参特有抗高脂血症PPI网络;(3)枳壳-柴胡特有抗高脂血症PPI网络。使用Cytoscape软件对PPI网络进行拓扑分析。
1.4 GO、KEGG分析
分别将SD-ZC-bd、SD-tbd、ZC-tbd导入生物学信息注释数据库 Metescape(http://metascape.org/) , 限定靶基因名称列表为“Homo sapiens”,进行GO基因本体与KEGG通路富集分析。通过共有与特有靶点的生物过程和通路分析,从生物学角度解释“同病异治”的科学内涵。
1.5 山楂-丹参和枳壳-柴胡抗高脂血症共有活性成分与抗高脂血症靶点对接
采用分子对接软件AutoDock,选取共有活性成分槲皮素(mol000098)和β-谷甾醇(mol000358)与KEGG通路分析结果中5个关键靶点蛋白(IL-6、TNF、PPARG、MAPK1、VEGFA)进行半柔性对接。将Mol2格式的活性成分处理为 PDBQT格式备用。靶点蛋白结构来自于RCSB蛋白数据库( http: / / www.rcsb.org),蛋白代号(PDB ID)分别为1alu (IL-6),1tnf (TNF),7awc (PPARG),1pme (MAPK1),1cz8 (VEGFA);采用Pymol 2.3 ( https: //pymol.org/2/) 软件抽取靶点蛋白的原有配体构象,保存为PDB的格式,用ADT对其进行去水分子和加氢加电荷处理,保存为PDBQT格式文件备用。利用Autodock分别对接上述活性成分和5个靶点,Pymol分析和观察化合物与蛋白对接结果。
2.结果
2.1山楂-丹参与枳壳-柴胡活性成分筛选及潜在靶点预测
根据OB、DL值筛选活性成分及靶点,山楂有11个活性成分,208个靶点[15-21];丹参有57个活性成分,783个靶点;枳壳有8个活性成分,122个靶点[22,23];柴胡有30个活性成分,392个靶点[24-33]。
2.2 山楂-丹参与枳壳-柴胡抗高脂血症共有靶点及特有靶点PPI图构建
String数据库的PPI蛋白网络互作关系分析表明,共有抗高脂血症靶点(SD-ZC-bd)有102个,山楂-丹参特有靶点(SD-tbd)16个,枳壳-柴胡特有靶点(ZC-tbd)20个,见图1。
图1 山楂-丹参与枳壳-柴胡抗高脂血症靶点交集图
a. 两药对抗高脂血症共有靶点 b.山楂-丹参特有靶点 c. 枳壳-柴胡药特有靶点
图2 山楂-丹参与枳壳-柴胡抗高脂血症共有靶点PPI图
图3 药对抗高脂血症特有靶点PPI图 (a 山楂-丹参 b枳壳-柴胡)
SD-ZC-bd所对应活性成分为槲皮素、β-谷甾醇、芦丁等,根据基因拓扑值(表1)抗高脂血症的重要靶点为白介素6(IL6)、肿瘤坏死因子(TNF)、促分裂原活化蛋白激酶(MAPK1)、血管内皮生长因子A(VEGFA)、 基质金属蛋白酶9(MMP9)、过氧化物酶体增殖物激活受体(PPARG)、表皮生长因子受体(EGFR)、纤溶酶原(SERPINE1)、血栓调节蛋白(THBD)、细胞间黏附分子(ICAM)、一氧化氮合成酶2(NOS2)等(见图2)。
SD-tbd所对应的活性成分为原花青素、芹黄素、木犀草素、丹参酮IIA,紫丹参萜醚类物质,根据靶点基因拓扑值大小为胰岛素(INS)、双重特异分裂活性蛋白激酶1(MAP2K1)、白介素4(Interleukin-4,IL4)、内皮素1(EDN1)、葡糖6磷酸酶(G6PC)、内皮素1受体(EDNRA)等(见图3a)。
ZC-tbd所对应的活性成分为柚皮素、山奈酚,根据靶点基因拓扑值大小为脂连蛋白(ADIPOQ)、低密度脂蛋白受体(LDLR)、血管细胞黏附蛋白1(VCAM1)、甾醇O-酰基转移酶(SOAT1)、肝磷酸酯酶1(CES1)等(见图3b)。
表1 山楂-丹参与枳壳-柴胡抗高脂血症共有靶点基因拓扑值
基因 靶点 介度 连接度 紧密度
IL6 Interleukin-6 657.1251928 46 0.621794872
TNF Tumor necrosis factor 552.9718004 46 0.610062893
VEGFA Vascular endothelial growth factor A 404.4381505 41 0.584337349
MAPK1 Mitogen-activated protein kinase 1 390.0983948 41 0.598765432
MMP9 Matrix metalloproteinase-9 575.5511403 37 0.570588235
IL1B Interleukin-1 beta 286.6257423 34 0.538888889
EGFR Epidermal growth factor receptor 310.2332697 33 0.570588235
EGF Pro-epidermal growth factor 319.2270501 32 0.567251462
CXCL8 Interleukin-8 78.60200785 30 0.538888889
MYC Myc proto-oncogene protein 171.8278908 30 0.54494382
PTGS2 Prostaglandin G/H synthase 2 211.3781184 30 0.554285714
CCL2 C-C motif chemokine 2 96.27608084 29 0.54494382
IL10 Interleukin-10 119.1941766 28 0.541899441
ICAM1 Intercellular adhesion molecule 1 116.641607 28 0.535911602
FOS Proto-oncogene c-Fos 645.5298 26 0.538889
MMP2 72 kDa type IV collagenase 135.952 26 0.530055
MAPK14
Mitogen-activated protein kinase 14 47.72538 24 0.524324
PPARG Peroxisome proliferator-activated receptor gamma 47.72538054 24 0.524324324
SERPINE1 Plasminogen activator inhibitor 1 233.5488 20 0.513228
NFKBIA NF-kappa-B inhibitor alpha 31.61 16 0.4874
IL1A
Interleukin-1 alpha 16.52696 15 0.453271
NOS2 Nitric oxide synthase, inducible 39.5979 14 0.485
F3 Tissue factor 48.35 11 0.4389
THBD Thrombomodulin 15.03084 7 0.400826
2.3 KEGG通路分析
利用Metascape进行KEGG通路富集分析,构建成分-靶点-通路网络图。SD-ZC-bd富集的通路主要有流体剪切力和动脉粥样硬化、糖尿病并发症中的AGE-RAGE、Toll样受体、TNF、MAPK等信号通路,见图4a。
SD-tbd富集的通路主要有PI3K-Akt、HIF-1信号通路,细胞自噬,胰岛素信号等,见图4b。
ZC-tbd主要涉及低密度脂蛋白及血浆脂蛋白清除、脂肪酸代谢等信号通路,见图4c。
图4 成分-靶点-通路网络图
a. 山楂-丹参药对与枳壳-柴胡药对 b. 山楂-丹参药对 c. 枳壳-柴胡药对
2.4 GO-BP分析
图5 生物过程(GO-BP)a 共有靶点 b 山楂-丹参特有靶点 c 枳壳-柴胡特有靶点
由图5可看出,SD-ZC-bd对应的生物过程主要包括脂多糖的反应,细胞对脂质的反应,细胞因子调节的代谢通路,活性氧代谢及神经递质生物合成过程等。SD-tbd的生物过程包括氧化应激的反应、蛋白质水解的正调控、细胞对胰岛素刺激的反应等。ZC-tbd的生物过程包括胆固醇转运,甾醇转运,低密度脂蛋白颗粒清除等。
2.5 两药对共有活性成分与核心靶点对接分析
利用AutoDock软件分别对槲皮素、β-谷甾醇两种活性成分分别与IL-6、TNF、PPARG、VEGFA、 MAPK1五个核心靶点进行分子对接。每种活性成分均能与五个靶点成功对接, 根据结合能选取最优构型, 对接能量结果见表2。由表2可看出,结合能都小于-0.4kcal/mol,说明槲皮素、β-谷甾醇和5个核心靶点均能进行自发对接。选取结合能最低的两个靶点TNF、PPARG和槲皮素、β-谷甾醇的最优构型进行相互作用分析(见图6)。经Pymol软件的可视化分析发现,β-谷甾醇可与TNF中的Lys-98和Glu-116形成氢键;与PPARG中的Ile-262、Glu-259形成氢键。槲皮素与TNF中的Ser-99、Gln-102等四个氨基酸残基形成氢键;槲皮素与PPARG中的Ser-201、Glu-207等五个氨基酸残基形成氢键。
表2 药对共有活性成分与核心靶点分子对接预测结合能(kcal/mol)
IL-6 TNF PPARG VEGFA MAPK1
槲皮素 -5.8 -6.92 -6.54 -4.63 -6.19
β-谷甾醇 -7.12 -10.8 -8.32 -5.72 -7.04
图6 药对活性成分与核心靶点分子对接模型
(红色:活性成分;绿色:核心靶点;蓝色:靶点对接氨基酸残基。a:槲皮素与TNF对接模型;b: β-谷甾醇与TNF对接模型;c: 槲皮素与PPARG对接模型;d: β-谷甾醇与PPARG对接模型)
3.讨论
本研究利用网络药理学数据平台,对山楂-丹参,枳壳-柴胡的活性成分及抗高脂血症靶点进行了比较研究,构建了两药对抗高脂血症的共有及特有靶点的PPI互作网络图、活性成分-靶点-通路网络图、靶点生物过程富集图,并对关键活性成分和靶点进行了分子对接。
两经典药对抗高脂血症共有活性成分为槲皮素、β-谷甾醇和芦丁,抗高脂血症的重要靶点为IL6、TNF、VEGFA、PPARG、MAPK1、MMP9、EGFR、SERPINE1、THBD、ICAM、NOS2等,涉及共有通路为流体剪切力和动脉粥样硬化通路、糖尿病并发症AGE-RAGE信号通路、Toll样受体、TNF、MAPK等信号通路,这些基本都已经被证实与高脂血症相关[34,35]。
研究报道槲皮素可显著降低小鼠血浆TC、TG水平,降低脂蛋白残粒刺激下IL-6的mRNA水平[36,37],通过MAPK通路降低脂肪合成相关的因子与酶的表达,减少脂肪生成[38]。槲皮素调控PPARG对抗高脂饮食喂养的大鼠肥胖[39],通过下调VEGFA和MMP9的蛋白表达水平,达到抑制血管再生的效果[40]。槲皮素可降低VEGF,IL-6等细胞因子的表达,减轻糖脂毒性介导的ROS产生,加速脂肪酸氧化,降低甘油三酯的聚集[41]。β-谷甾醇属于甾醇类物质,和TC有相似的骨架结构,可有效地降低血液TC和TG水平,减少脂肪酸合成相关基因表达,增加脂肪酸氧化,减少脂质合成[42]。甾醇类对肝中胆固醇的生物合成和摄取主要通过MMP9基因来实现[43],谷甾醇显著降低血清炎症因子TNF-α和IL-6的水平,抑制与肥胖相关的慢性炎症进展[44]。芦丁改善PPARG的蛋白表达量[45],降低血清和免疫细胞中的TG,TC水平,通过干预MMP9等基因,保护脂多糖介导的小鼠心脏损伤[46]。
两药对共有活性成分共有靶点对应的生物过程主要包括LPS反应,细胞对脂质的反应,细胞因子调节的代谢通路,活性氧代谢过程等。槲皮素提高活性氧代谢过程中的谷胱甘肽、超氧化物歧化酶、过氧化氢酶的水平来提升脂质的抗氧化能力[47]。槲皮素和β-谷甾醇抑制脂质的过氧化反应,阻碍高脂饮食诱导的大鼠高脂血症和肝毒性进程[48]。芦丁抑制LPS刺激巨噬细胞的产生,下调细胞因子、环氧合酶表达,来减轻炎症反应[49]。芦丁提高抗氧化酶SOD和过氧化氢酶CAT活性,提高氧化产物丙二醛和H2O2的水平,平衡心脏氧化和抗氧化系统,保护脂多糖导致的小鼠心脏损伤[46]和肝、肾等组织功能紊乱[50]。分子对接分析也表明,药对共有活性成分槲皮素和β-谷甾醇均可以和相关核心靶点蛋白结合,达到抗高脂血症的效果。
山楂-丹参药对活性成分原花青素、芹黄素、木犀草素、丹参酮IIA,紫丹参萜醚类物质特有抗高脂血症靶点为INS、IL4、EDN1、EDNRA、G6PC等;涉及PI3K-Akt、HIF-1、细胞自噬及胰岛素等信号通路;生物过程包括对氧化应激的反应、蛋白质水解的正调控、细胞对胰岛素刺激的反应等。
原花青素通过PI3K-Akt信号通路促内皮细胞NO释放,减轻大鼠血管压力[51],可清除过量ROS,提升肝细胞抗氧化酶GPs/SOD 活性[52],通过减轻氧化压力,抑制胰岛β-1细胞凋亡[53]。木犀草素可增加IL4水平,减少脂质过氧化物,增加抗氧化和抗炎活性[54]。芹黄素、木犀草素属于黄酮类物质,可抑制糖异生基因G6PC和脂肪生成基因乙酰CoA羟化酶的表达[55]。 芹黄素糖苷抑制肝脏中G6PC的mRNA水平,减少关键糖异生酶水平,阻止糖异生[56]。丹参酮IIA可阻止HIF-1信号通路介导的炎性和氧化压力[57],提高内皮NO合成的表达,抑制内皮素EDN1,下调内皮素受体EDNRA表达,舒张血管,减轻血管壁压力,达到缓解高脂血症进程的作用[58]。
枳壳-柴胡药对活性成分柚皮素、山奈酚特有靶点为ADIPOQ、LDLR、VCAM1、CES1、SOAT1等,主要涉及低密度脂蛋白及血浆脂蛋白清除、脂肪酸代谢等信号通路,包括胆固醇转运,甾醇转运,低密度脂蛋白颗粒清除等。
柚皮素可降低血脂和肝中脂肪聚集,达到抗高脂血症、抗糖尿病和抗炎的作用[59],提高脂肪细胞中脂连蛋白ADIPOQ的表达和胰岛素敏感,抑制脂肪生成[60],作用于LDLR调控脂肪酸合成及胆固醇摄取[61]。山奈酚显著降低血浆和肝组织中胆固醇、甘油三酯、游离脂肪酸、低密度脂蛋白水平,升高高密度脂蛋白含量,结合游离胆固醇并转运到肝脏降解[62],诱导LDLR基因的表达,增加低密度脂蛋白的清除[63],提高脂肪酸氧化代谢信号通路,抑制脂肪细胞的脂质聚集[64]。
综上所述,山楂-丹参药对与枳壳-柴胡药对在抗高脂血症方面的靶点既有相同,又有不同。通过对共有成分槲皮素、β-谷甾醇和芦丁的共有靶点(IL6,TNF,VEGF、PPARG、MAPK)及其所在的脂质、活性氧等生物过程和剪切力与动脉粥样硬化、糖尿病中的age-rage等信号通路的分析,阐明两药对抗高脂血症的“同病异治”机理,通过对两药对各自特异性靶点、通路、生物过程抗高脂血症的分析,进一步补充了不同药对各自抗高脂血症的特色,上述预测靶点、通路、生物过程与已知文献报道的药物作用机理相吻合。本研究为浩瀚的中药复方“同病异治”的药理研究提供了新思路。
参考文献
[1] 姚春鹏译注.黄帝内经·素问[M]. 北京:中华书局,2010:614-615.
[2] 《中医大辞典》编辑委员会.简明中医辞典(修订本)[M].北京:人民卫生出版社,1979:384-385.
[3]孙广仁.中医基础理论[M].北京:中国中药出版社,2004:221-222.
[4]张艺嘉,樊珂,崔小数,曹珊. 中医药治疗动脉粥样硬化临床研究进展[J].中医学报,2020,35(9):1908-1912.
[5]靳宏光, 朱星, 赵萍萍等. 从痰瘀论治动脉粥样硬化的研究进展[J].中医临床研究, 2020,12(4):145-148.
[6]綦向军, 周润吉, 刘惠平等. 中成药治疗高脂血症的成方规律分析[J].中国中药杂志, 2019, 44(19):211-213.
[7]郭锦荣, 田俊. 心系病常用药对浅述[J]. 陕西中医,2017,38(10):1479-1480.
[8] Lim C, Lim S, Lee B ,et al. Effect of methanol extract of Salviae miltiorrhizae Radix in high-fat diet-induced hyperlipidemic mice[J]. Chin Med-UK, 2017, 12(2):611-614.
[9] Xu H, Xu HE , Ryan D. A Study of the Comparative Effects of Hawthorn Fruit Compound and Simvastatin on Lowering Blood Lipid Levels[J]. Am J Chinese Med: Comp Med East West,2009,37(5):903-908.
[10] 张建永,晏仁义,王岚,王建露,王万丹,侯瑞,刘红亮,杨洪军,梁日欣,杨滨.丹参山楂有效组分配伍抗动脉粥样硬化的实验研究[J].中国中药杂志,2013,38(12):1987-1991.
[11] Bai G, Hou Y Y, Jiang M, et al. Integrated systems biology and chemical biology approach to exploring mechanisms of traditional Chinese medicines [J]. Chin Herb Med, 2016, 8(2): 99-106.
[12] Liang X, Li H, Li S. A novel network pharmacology approach to analyse traditional herbal formulae: The Liu-wei-di-huang Pill as a case study [J]. Mol Biosyst, 2014, 10(5): 1014-1022.
[13] 高耀,吴丹,田俊生,等.逍遥散和开心散“同病异治” 抑郁症的网络药理学作用机制研究[J].中草药,2018,49(15):3483-3492.
[14] 赵灿,杨金伟,吴勇军,等.茯苓杏仁甘草汤与橘枳姜汤“同病异治”冠状动脉粥样硬化性心脏病[J].中医学报,2019,34(11):2412-2417.
[15]杨帆,戚莹雪,张永清. 丹参地上部分化学成分与药理作用研究进展[J].中成药,2020,42(6):1558-1564.
[16]王云来,樊守艳,韩进.山楂丹参合用调节血脂作用的实验研究[J].浙江中医药大学学报,2006,30(5):467-468.
[17] 邵峰,谷丽菲,钟丹丹,等山楂体外降三酰甘油主要活性组分谱效关系研究 [J].中草药, 2017, 48(2):339-344.
[18] 张伟涛,李德坤,岳洪水,等. 丹参水提取物成分的定性与半定量研究[J].中草药,2019,50(15):3598-3606.
[19]朱黎霞,王利胜,张英丰.丹参总酚酸、山楂总黄酮组分配伍对高脂血症大鼠血脂、超氧化物歧化酶及丙二醛的影响[J].中国医药导报,2014,11(20):9-12.
[20] 陈少军,陈宏降,郭章华. 丹参中抗血栓活性成分的虚拟筛选[J]. 中药药理与临床,2013,26(9):103-106.
[21] 束 云,李贻奎,李连达. 复方丹参制剂有效成分及大鼠在体肠吸收比较研究[J]. 中药药理与临床,2011,27(6):76-79.
[22]刘欣媛,嵇长久,彭文文,等.中药枳壳的化学成分研究[J].中国药学杂志,2018, 53(19):1627-1631.
[23] 陈欢,高萌,罗小泉,等. 不同产地枳壳药材中 12 种有效成分的主成分分析和判别分析 [J].中草药, 2019, 50(14) :3433-3437.
[24]刘玉法,阎玉凝,武莹,等. GC-MS分析北柴胡地上部分的挥发油化学成分[J].北京中医药大学学报,2004,27(5):59-61.
[25] 杨越,杨留长,纪晓亮,等. 近红外光谱法快速测定柴胡提取过程中的药效成分[J]. 分析测试学报,2020,39(11):1311-1319.
[26] 黄伟,孙蓉. 柴胡皂苷类成分化学与药理和毒理作用研究进展[J].中药药理与临床,2010,26(3):71-74.
[27]王晖,张改霞,杨成民,等. 历代本草所用柴胡物种辨析[J].中草药,2018,49(20):4928-4934.
[28]李振凯,宋乐,雷燕,等. 银柴胡生物学、化学成分及药理作用研究进展[J]. 南京中医药大学学报, 2020,36(1):136-140.
[29]李振凯,宋乐,雷燕,等. 银柴胡生物学、化学成分及药理作用研究进展[J]. 南京中医药大学学报 ,2020,36(1):136-140.
[30]阴奇材,陈聪聪,田俊生,等.基于UPLC-QE-Orbitrap-MS技术的柴胡-白芍药对血清药物化学分析[J].药学学报,2019,54(12):2296-2302.
[31]王玲娇,刘琰,郑旭光,等. HPLC 法同时测定柴胡安心胶囊中7 种有效成分的含量[J].中国临床药理学杂志,2019,10:2399-2402.
[32] 周瑾,黄 菲,吴晓俊,等.柴胡疏肝散抗抑郁化学成分和药理作用研究进展[J].中药药理与临床,2019,35(2):174-179.
[33]张程亮,兰露露,任秀华,等.柴胡黄芩药对的基础研究探析[J].世界科学技术-中医药现代化-中药研究,2018年,21(1):33-37.
[34]张旭静, 黄久仪, 王桂清. 血流动力学与动脉粥样硬化[J]. 国际脑血管病杂志,2006,14(3):228-230.
[35]佘一鸣,胡永慧,张莉野, 等. 中药调血脂的研究进展[J].中草药,2017,48(17):3636-3644.
[36] 张梦,李文婧,杜芬,等.槲皮素对载脂蛋白E基因敲除小鼠动脉粥样硬化斑块的消退作用[J].中国药师,2019,5:800-804.
[37] Rihab K, Zaineb D, Imene B, et al. Erica multiflora extract rich in quercetin-3-O-glucoside and kaempferol-3-O-glucoside alleviates high fat and fructose diet-induced fatty liver disease by modulating metabolic and inflammatory pathways in Wistar rats[J]. J Nutr Biochem, 2020,108490.
[38] Ahn J,Lee H ,Kim S,et al. The anti-obesity effect of quercetin is mediated by the AMPK and MAPK signaling pathways[J]. BBRC, 2008, 373(4):545-549.
[39]Jung CH, Cho I, Ahn J, et al. Quercetin Reduces High-Fat Diet-Induced Fat Accumulation in the Liver by Regulating Lipid Metabolism Genes [J]. Phytotherapy Res, 2013, 27(1):139-143.
[40]Liu Y, Tang Z G, Yang J Q, et al. Low concentration of quercetin antagonizes the invasion and angiogenesis of human glioblastoma U251 cells[J]. Onco Targets and Ther ,2017,10:4023-4028.
[41]Herranz-Lopez M, Olivares-Vicente M, Rodriguez Gallego ER, et al. Quercetin metabolites from Hibiscus sabdariffa contribute to alleviate glucolipotoxicity-induced metabolic stress in vitro[J]. Food Chem Toxicol,2020,144:111606.
[42]唐娜.不同油脂对高脂饮食小鼠糖脂代谢的影响[D].江苏无锡:江南大学,2019.
[43]Hernandez-Anzaldo S, Brglez V, Hemmeryckx B, et al. Novel Role for Matrix Metalloproteinase 9 in Modulation of Cholesterol Metabolism[J] .J AM Heart Assoc, 2016 10.1016
[44]Kurano M, Hasegawa K, Kunimi M, et al. Sitosterol prevents obesity-related chronic inflammation[J]. BBA-Mol Cell Bioll,2018,1863(2):191-198.
[45]陈能.芦丁、运动及其联合干预对高脂饮食诱导的小鼠肥胖模型脂肪组织脂肪分解和内质网应激的影响[D].苏州:苏州大学,2016.
[46]Liu X C, Zheng L, Liu M, et al. Protective effects of rutin on lipopolysaccharide-induced heart injury in mice[J]. J Toxicol Sci, 2018,43(4-6):329-337.
[47]Jaishree V, Narsimha S. Swertiamarin and quercetin combination ameliorates hyperglycemia, hyperlipidemia and oxidative stress in streptozotocin-induced type 2 diabetes mellitus in wistar rats[J]. Biomed Pharmacother , 2020,130:110561-110569.
[48]Sikder K, Das N, Kesh S,et al. Quercetin and beta-sitosterol prevent high fat diet induced dyslipidemia and hepatotoxicity in Swiss albino mice[J]. Iindian J Exp Biol, 2014,52(1):60-66.
[49]Lee D,Yu J, Huang P ,et al. Identification of Anti-Inflammatory Compounds from Hawaiian Noni (Morinda citrifolia L.)Fruit Juice[J]. Molecules, 2020,25(21), doi:10.3390.
[50]Rakshit S, Shukla P, Verma A,et al. Protective role of rutin against combined exposure to lipopolysaccharide and D-galactosamine-induced dysfunctions in liver, kidney, and brain: Hematological, biochemical, and histological evidences[J].J Food Bilchem,2021:e13605.
[51]Byun E B, Ishikawa T, Suyam A ,et al. A procyanidin trimer, C1, promotes NO production in rat aortic endothelial cells via both hyperpolarization and PI3K/Akt pathways[J]. Eur J Pharmacol,2012,692(1-3):52-60.
[52]Su H M, Li Y T , Hu D W ,et al. Procyanidin B2 ameliorates free fatty acids-induced hepatic steatosis through regulating TFEB-mediated lysosomal pathway and redox state[J]. Free Radic Biol Med, 2018,126:269-286 .
[53]Wang X Y, Zhu B R, Jia Q, et al. Cinnamtannin D1 Protects Pancreatic beta-Cells from Glucolipotoxicity-Induced Apoptosis by Enhancement of Autophagy In Vitro and In Vivo[J]. J Agric Food Chem,2020,68(45):12617-12630.
[54]Boeing T, De S P, Speca S ,et al. Luteolin prevents irinotecan-induced intestinal mucositis in mice through antioxidant and anti-inflammatory properties[J].Brit J Pharmacol, 2020, 177(10):2393-2408.
[55]Bumke-Vogt C, Osterhoff M , Borchert A ,et al. The Flavones Apigenin and Luteolin Induce FOXO1 Translocation but Inhibit Gluconeogenic and Lipogenic Gene Expression in Human Cells[J]. PLOS ONE, 2014,9(8):e104321.
[56]Li T G , Chang R , Zhang H J ,et al. Water Extract of Potentilla discolorBunge Improves Hepatic Glucose Homeostasis by Regulating Gluconeogenesis and Glycogen Synthesis in High-Fat Diet and Streptozotocin-Induced Type 2 Diabetic Mice[J]. Front Nutr ,2020,7, doi: 10.3389.
[57]Guan R J , Wang J , Li Z Y, et al. Sodium Tanshinone IIA Sulfonate Decreases Cigarette Smoke-Induced Inflammation and Oxidative Stress via Blocking the Activation of MAPK/HIF-1 alpha Signaling Pathway[J]. Front.Pharmacol, 2018, 9, doi: 10.3389.
[58]Chen L L , Guo Q H , Chang Y, et al. Tanshinone IIA ameliorated endothelial dysfunction in rats with chronic intermittent hypoxia[J]. Cardiovasc Pathol, 2017,31:47-53.
[59]Zhang JA , Zhao L , Cheng Q, et al. Structurally Different Flavonoid Subclasses Attenuate High-Fat and High-Fructose Diet Induced Metabolic Syndrome in Rats[J]. J Agric Food Chem, 2018,66(46):12412-12420.
[60]Richard A J, Amini-Vaughan Z, Ribnicky D M,et al. Naringenin Inhibits Adipogenesis and Reduces Insulin Sensitivity and Adiponectin Expression in Adipocytes[J]. Evid Based Complement Alternat Med, 2013:549750.
[61] Chen K K, Ma Z C, Yan X N, et al. Investigation of the Lipid-Lowering Mechanisms and Active Ingredients of Danhe Granule on Hyperlipidemia Based on Systems Pharmacology[J]. Front Pharmacol,2020, 11,doi: 10.3389.
[62]Al-Numair K S, Veeramani C, Alsaif M A, et al. Influence of kaempferol on lipid metabolic changes in streptozotocin-induced diabetic rats[J]. Prog Nutr, 2013, 15 (4): 255-264.
[63]Ochiai A, Miyata S, Iwase M, et al. Kaempferol stimulates gene expression of low-density lipoprotein receptor through activation of Sp1 in cultured hepatocytes[J]. Sci Rep,2016,6,doi: 10.1038.
[64]Lee B, Kwon M, Choi J S, et al. Kaempferol Isolated from Nelumbo nucifera Inhibits Lipid Accumulation and Increases Fatty Acid Oxidation Signaling in Adipocytes[J]. J Med Food, 2015,18(12):1363-1370.
上一条:蜡疗联合整脊法治疗颈型颈椎病的临床疗效观察...
下一条:正念减压对肺癌患者疗效影响的系统评价...